Рівні експресії HIF-1α та довгої РНК, що не кодує, HIF1А-AS1 як прогностичні маркери тяжкого перебігу COVID-19 у пацієнтів із діабетом та ожирінням

Автор(и)

  • Є.І. Дубровський Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ, Україна https://orcid.org/0009-0009-8482-3234
  • Т.І. Древицька Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-3192-4682
  • А.Г. Портниченко Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0003-2509-101X
  • В.Є. Досенко Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-6919-7724

DOI:

https://doi.org/10.30978/TB2024-4-49

Ключові слова:

HIF-1α; HIF1A-AS1; гіпоксія; цукровий діабет; ожиріння; прогностичні маркери; SARS-CoV-2; COVID-19.

Анотація

Пандемія коронавірусної хвороби-2019 (COVID-19) виявила численні проблеми медичного сортування та своєчасного надання допомоги через масовий наплив пацієнтів у медичні заклади. Хоча визначено групу ризику розвитку COVID-19, не всі пацієнти цієї групи мають тяжкий перебіг захворювання, більшість одужують без потреби в кисневій підтримці чи інтенсивній терапії.

Мета роботи — вивчити взаємозв'язок між рівнями експресії HIF-1α і довгої РНК, що не кодує, HIF1A-AS1 та тяжкістю COVID-19 у пацієнтів із групи високого ризику.

Матеріали та методи. В інфекційне відділення Київської міської клінічної лікарні № 4 через 7—12 днів амбулаторного лікування після початку захворювання були госпіталізовані 36 пацієнтів із коморбідною патологією (ожирінням (індекс маси тіла > 30 кг/м2), артеріальною гіпертензією та субкомпенсованим цукровим діабетом 2 типу. У всіх пацієнтів COVID-19 був підтверджений методом полімеразної ланцюгової реакції. Тяжкість захворювання оцінювали за даними пульсоксиметрії та тривалістю кисневої залежності за класифікацією ВООЗ. Тяжкість захворювання визначалась ретроспективно згідно з критеріями ВОЗ по класифікації захворювання COVID-19. Згідно з ними, пацієнти були розподілені на три групи за ступенем тяжкості: легкий (n = 14), середній (n = 42) і тяжкий (n = 37). Контрольна група — 7 практично здорових донорів з індексом маси тіла < 25 кг/м2 і відсутністю ознак діабету. Проведе­но клінічний аналіз, екстракцію РНК із лейкоцитів периферичної крові, зворотну транскрипцію, полімеразну ланцюгову реакцію в реальному часі та визначення рівня експресії HIF-1α і HIF1A-AS1.

Результати та обговорення. Рівень експресії HIF-1α у лейкоцитах становив від 6,8 до 146,9 у. о., у контрольній групі — (6,8 ± 3,2) у. о., що в 4,3 разу нижче, ніж у групі з легким перебігом захворювання ((29,4 ± 4,1) у. о.). У групі із середньотяжким перебігом рівень експресії HIF-1α був майже вдвічі вищим ((55,7 ± 16,8) у. о.), тоді як у групі з тяжким перебігом був у 5 разів вищим, ніж у групі з легким перебігом, і в 2,6 разу вищим, ніж у групі із середньотяжким перебігом ((146,9 ± 44,9) у. о., p < 0,05). Рівень експресії РНК HIF1A-AS1 у контрольній групі та у пацієнтів із легким перебігом COVID-19 не відрізнявся статистично значущо ((32,096 ± 7,9) та (29,3 ± 7,1) у. о.). Однак у групі із середньотяжким перебігом рівень експресії був більшим у 5 разів порівняно з групою з легким перебігом ((146,4 ± 37,4) у. о., p < 0,05). При тяжкому перебігу COVID-19 рівень експресії в 9,8 разу перевищував показник групи з легким перебігом (p < 0,05) і в 1,9 разу — показник групи із середньотяжким перебігом ((286,7 ± 77,3) у. о.).

Висновки. Уперше встановлено, що коморбідний перебіг COVID-19 на тлі цукрового діабету та ожиріння супроводжується зростанням експресії довгої РНК, що не кодує, HIF1A-AS1 залежно від тяжкості перебігу захворювання. Рівні експресії HIF-1α та HIF1A-AS1 у лейкоцитах крові значно зростають у пацієнтів із середньотяжким та тяжким перебігом COVID-19 на догоспітальному етапі, до настання клінічного погіршення. Це свідчить про те, що ці показники можна розглядати як важливі прогностичні біомаркери тяжкого перебігу COVID-19, що доповнюють один одного, у групах ризику з коморбідною патологією, особливо при метаболічних розладах. Роль HIF1A-AS1 у контексті респіраторних захворювань потребує подальшого глибокого вивчення та аналізу. На нашу думку, HIF-1α через зв’язок із HIF1А-AS1 може бути терапевтичною мішенню при лікуванні тяжких респіраторних захворювань, які супроводжуються гострим респіраторним дистрес-синдромом.

Біографії авторів

Є.І. Дубровський, Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ

аспірант, мол. наук. співр. лабораторії імунології

Т.І. Древицька, Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ

к. біол. н., ст. наук. співр. відділу загальної та молекулярної патофізіології

А.Г. Портниченко, Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ

д. мед. н., зав. відділу гіпоксії

В.Є. Досенко, Інститут фізіології імені О.О. Богомольця, Національна академія наук України, Київ

д. мед. н., проф., зав. відділу загальної та молекулярної патофізіології

Посилання

Codo AC, Davanzo GG, de Monteiro LB, et al. Elevated glucose levels favor SARS-CoV-2 infection and monocyte response through a HIF-1α/Glycolysis-Dependent Axis. Cell Metab. 2020;32:1-10. http://doi.org/10.2139/ssrn.3606770.

Dubrovskyi E, Drevytska T, Pashevin D, Tumanovska L, Stroy D, Dosenko V. Level of cell-free DNA in plasma as an early marker of hospital course of covid-19 in patients with type 2 diabetes and obesity. Fiziol Zh. 2023;69(4):74-84. http://doi.org/10.15407/fz69.04.074.

Dubrovskyi E, Drevytska T, Stroy D, Dosenko V. High level of RNA HAS2-AS1 in the buffy coat of a patient blood sample is a more informative prognostic marker of COVID-19 clinical course compared to the level of hyaluronic acid in plasma. Ukr Biochem J. 2024;96(4):62-68. http://doi.org/10.15407/ubj96.04.062.

Farr RJ, Rootes CL, Rowntree LC, et al. Altered microRNA expression in COVID-19 patients enables identification of SARS-CoV-2 infection. PLoS Pathog. 2021 Jul 28;17(7):e1009759. http://doi.org/10.1371/journal.ppat.1009759.

Foy BH, Carlson JCT, Reinertsen E, et al. Association of red blood cell distribution width with mortality risk in hospitalized adults with SARS-CoV-2 infection. JAMA Netw Open. 2020 Sep 1;3(9):e2022058. http://doi.org/10.1001/jamanetworkopen.2020.22058.

Gambardella J, Sardu C, Morelli MB, et al. Exosomal MicroRNAs drive tromboembolism in COVID-19. Circulation. 2020;142:A221. http://doi.org/10.1101/2020.06.16.20133256.

Gong, W, Tian M, Qiu H, Yang Z. Elevated serum level of lncRNA-HIF1A-AS1 as a nove diagnostic predictor for worse prognosis in colorectal carcinoma. Cancer Biomark. 2017 Dec 6;20(4):417-424. http://doi.org/10.3233/CBM-170179.

Guo X, Zhu Z, Zhang W, et al. Nuclear translocation of HIF-1α induced by influenza A (H1N1) infection is critical to the production of proinflammatory cytokines: HIF-1α nuclear translocation induced by H1N1. Emerg Microbes Infect. 2017 May 24;6(5):e39. http://doi.org/10.1038/emi.2017.21.

Guo Y, Hu K, Li Y, et al. Targeting TNF-α for COVID-19: Recent advanced and controversies. Front Public Health. 2022 Feb 11;10:833967. http://doi.org/10.3389/fpubh.2022.833967.

Jahani M, Dokaneheifard S, Mansouri K. Hypoxia: A key feature of COVID-19 launching activation of HIF-1 and cytokine storm. J Inflamm (Lond). 2020 Oct 29;17:33. http://doi.org/10.1186/s12950-020-00263-3.

Kondo S, Seo SY, Yoshizaki T, et al. EBV latent membrane protein 1 up-regulates hypoxia-inducible factor 1α through Siah1-mediated down-regulation of prolyl hydroxylases 1 and 3 in nasopharyngeal epithelial cells. Cancer Res. 2006 Oct 15;66(20):9870-7. http://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-1679.

Lee KY. Pneumonia, acute respiratory distress syndrome, and early immune-modulator therapy. Int J Mol Sci. 2017 Feb 11;18(2):388. http://doi.org/10.3390/ijms18020388.

Leisegang MS, Bains JK, Seredinski S, et al. HIF1α-AS1 is a DNA:DNA:RNA triplex-forming lncRNA interacting with the HUSH complex. Nat Commun. 2022;13:6563. http://doi.org/10.1038/s41467-022-34252-2.

Masuda S, Nakazawa D, Shida H, et al. NETosis markers: Quest for specific, objective, and quantitative markers. Clin Chim Acta. 2016 Aug 1:459:89-93. http://doi.org/10.1016/j.cca.2016.05.029.

Nizet V, Johnson RS. Interdependence of hypoxic and innate immune responses. Nat Rev Immunol. 2009 Sep;9(9):609-17. http://doi.org/10.1038/nri2607.

Opitz B, van Laak V, Eitel J, Suttorp N. Innate immune recognition in infectious and noninfectious diseases of the lung. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Jun 15;181(12):1294-309. http://doi.org/10.1164/rccm.200909-1427SO.

Page LK, Staples KJ, Spalluto CM, Watson A, Wilkinson TMA. Influence of hypoxia on the epithelial-pathogen interactions in the lung: implications for respiratory disease. Front Immunol. 2021 Mar 24;12:653969. http://doi.org/10.3389/fimmu.2021.653969.

Pearce EL, Pearce EJ. Metabolic pathways in immune cell activation and quiescence. Immunity. 2013 Apr 18;38(4):633-43. http://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.04.005.

Plowman T, Lagos D. Non-coding RNAs in COVID-19: Emerging insights and current questions. Non-Coding RNA. 2021;7:54. http://doi.org/10.3390/ncrna7030054.

Ren L, Zhang W, Han P, et al. Influenza A virus (H1N1) triggers a hypoxic response by stabilizing hypoxia-inducible factor-1α viainhibition of proteasome. Virology. 2019;530:51-8.

Ripoli M, D’Aprile A, Quarato G, et al. Hepatitis C virus-linked mitochondrial dysfunction promotes hypoxia-inducible factor 1α-mediated glycolytic adaptation. J Virol. 2010;84:647-60.

Ruetzler K, Szarpak Ł, Ładny JR, et al. D-dimer levels predict COVID-19 severity and mortality. Kardiol Pol. 2021 Feb 25;79(2):217-218. PMID: 33635034.

Sanei F, Wilkinson T. Influenza vaccination for patients with chronic obstructive pulmonary disease: Understanding immunogenicity, efficacy and effectiveness. Ther Adv Respir Dis. 2016;10(4):349-67. http://doi.org/10.1177/1753465816646050.

Santos SA, Andrade Júnior DR. HIF-1alpha and infectious diseases: a new frontier for the development of new therapies. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2017 Dec 21:59:e92. http://doi.org/10.1590/S1678-9946201759092.

Sarkar M, Niranjan N, Banyal PK. Mechanisms of hypoxemia. Lung India. 2017 Jan-Feb;34(1):47-60. http://doi.org/10.4103/0970-2113.197116. Erratum in: Lung India. 2017 Mar-Apr;34(2):220. http://doi.org/10.4103/0970-2113.201292.

Shah C, Grando DJ, Rainess RA, et al. Factors associated with increased mortality in hospitalized COVID-19 patients. Ann Med Surg (Lond). 2020 Dec:60:308-313. http://doi.org/10.1016/j.amsu.2020.10.071

Smail SW, Babaei E, Amin K, Abdulahad WH. Serum IL-23, IL-10, and TNF-α predict in-hospital mortality in COVID-19 patients. Front Immunol. 2023 May 22;14:1145840. http://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1145840.

Sullivan R, Graham C. Hypoxia-driven selection of the metastatic phenotype. Cancer Metastasis Rev. 2007 Jun;26(2):319-31. http://doi.org/10.1007/s10555-007-9062-2.

Sutherland RM. Tumor hypoxia and gene expression—implications for malignant progression and therapy. Acta Oncol. 1998;37(6):567-74. http://doi.org/10.1080/028418698430278.

Tian M, Liu W, Li X, et al. HIF-1α promotes SARS-CoV-2 infection and aggravates inflammatory responses to COVID-19. Sig Transduct Target Ther. 2021;6:308. http://doi.org/10.1038/s41392-021-00726-w.

Wang S, et al. BRG1 expression is increased in thoracic aortic aneurysms and regulates proliferation and apoptosis of vascular smooth muscle cells through the long non-coding RNA HIF1A-AS1 in vitro. Eur J Cardiothorac Surg. 2015 Mar;47(3):439-46. http://doi.org/10.1093/ejcts/ezu215.

Wilkinson TMA, Donaldson GC, Johnston SL, Openshaw PJM, Wedzicha JA. Respiratory syncytial virus, airway inflammation, and FEV1 decline in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 2006;173(8):871-6. http://doi.org/10.1164/rccm.200509-1489OC.

Wong BW, Marsch E, Treps L, Baes M, Carmeliet P. Endothelial cell metabolism in health and disease: impact of hypoxia. EMBO J. 2017 Aug 1;36(15):2187-203. http://doi.org/10.15252/embj.201696150.

Wu Y, Ding J, Sun Q, et al. Long noncoding RNA hypoxia-inducible factor 1 alpha-antisense RNA 1 promotes tumor necrosis factor-α-induced apoptosis through caspase 3 in Kupffer cells. Medicine (Baltimore). 2018 Jan;97(4):e9483. http://doi.org/10.1097/MD.0000000000009483.

Xi Y, Kim T, Brumwell AN, et al. Local lung hypoxia determines epithelial fate decisions during alveolar regeneration. Nat Cell Biol. 2017 Aug;19(8):904-914. http://doi.org/10.1038/ncb3580.

Zhang J, Sun Y, Ma J, Guo X. Deciphering the molecular mechanism of long non-coding RNA HIF1A-AS1 regulating pancreatic cancer cells. Ann Med Surg (Lond). 2024 Apr 29;86(6):3367-77. http://doi.org/10.1097/MS9.0000000000002097.

Zhao Y, Feng G, Wang Y, Yue Y, Zhao W. Regulation of apoptosis by long non-coding RNA HIF1A-AS1 in VSMCs: implications for TAA pathogenesis. Int J Clin Exp Pathol. 2014 Oct 15;7(11):7643-52. PMID: 25550800 PMCID: PMC4270571.

Zheng F, Chen J, Zhang X, et al. The HIF-1α antisense long non-coding RNA drives a positive feedback loop of HIF-1α mediated transactivation and glycolysis. Nat Commun. 2021 Feb 26;12(1):1341. http://doi.org/10.1038/s41467-021-21535-3.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-12-05

Номер

Розділ

Оригінальні дослідження