Визначення сенсибілізації до кліщових алергенів D. pteronyssinus та D. farinae у хворих на респіраторні алергійні захворювання за допомогою імуноблоту та мультиплексного компонентного тестування

A.Ye. Bogomolov; S.V. Zaykov; О.P. Nazarenko

doi:10.30978/TB2020-1-43

Автор(и)

A.Ye. Bogomolov Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова, Україна https://orcid.org/0000-0002-5336-4858
S.V. Zaykov Національна медична академія післядипломної освіти імені П.Л. Шупика, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-9276-0490
О.P. Nazarenko Клініка імунології та алергології «Форпост», Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.30978/TB2020-1-43

Ключові слова:

алергія, імуноблотинг, IgE, молекулярна алергологія

Анотація

Мета роботи — оцінити діагностичні параметри методів імуноблоту та ImmunoCAP ISAC для визначення сенсибілізації до алергенів кліща домашнього пилу Dermatophagoides pteronyssinus та Dermatophagoides farinae у пацієнтів з респіраторними алергійними захворюваннями — алергійним ринітом та бронхіальною астмою.

Матеріали та методи. У процесі цього дослідження двома різними методами специфічної алергологічної діагностики (in vitro) було обстежено 40 пацієнтів, хворих на бронхіальну астму та/або алергійний риніт. Дослідження було відкритим, рандомізованим, порівняльним. Кількісне визначення специфічних IgE в сироватці крові проводили за допомогою методу імуноблоту RIDA® AllergyScreen (R-Biopharm AG, Німеччина) на базі приватної лабораторії ТОВ «Алерго-імунологічний центр КПП». Обстеження методом ImmunoCAP ISAC було виконано у Клініці імунології та алергології «Форпост».

Результати та обговорення. Сенсибілізація до алергену D. farinae склала 35,0 % (14 осіб) за наявності специфічних IgЕ методом Rida AllergyScreen, 42,5 % (17 осіб) за наявності специфічних IgЕ методом ImmunoCAP ISAC; сенсибілізація до алергену D. рteronyssinus склала 35,0 % (14 осіб) за наявності специфічних IgЕ методом Rida AllergyScreen, 40,0 % (16 осіб) за наявності специфічних IgЕ методом ImmunoCAP ISAC.

Висновки. Як метод для кількісного визначення специфічних IgE до алергену D. farinae імуноблот порівняно з ImmunoCAP ISAC має високу специфічність та прогностичність позитивного результату (100 %), проте чутливість та прогностичність негативного результату мають значення 82,35 % (95 % ДІ: 56,57—96,20) та 88,46 % (95 % ДІ: 73,30; 95,54) відповідно, а точність методу складає 92,5 % (95 % ДІ: 79,61—98,43).
Як метод для кількісного визначення специфічних IgE до алергену D. pteronyssinus імуноблот порівняно з ImmunoCAP ISAC, аналогічно до результатів попереднього тестування, має високу специфічність та прогностичність позитивного результату (100 %), проте чутливість та прогностичність негативного результату мають значення 75,00 % (95 % ДІ: 47,62—92,73) та 85,71 % (95 % ДІ: 71,97—93,34) відповідно, а точність методу складає 90,00 % (95 % ДІ: 76,34—97,21).

Біографії авторів

A.Ye. Bogomolov, Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова

Богомолов Артемій Євгенійович
к. мед. н., доц. кафедри фтизіатрії з курсом клінічної імунології
21018, м. Вінниця, вул. Пирогова, 56

S.V. Zaykov, Національна медична академія післядипломної освіти імені П.Л. Шупика, Київ

Зайков Сергій Вікторович
д. мед. н., проф. кафедри фтизіатрії та пульмонології

О.P. Nazarenko, Клініка імунології та алергології «Форпост», Київ

Назаренко Олександр Павлович
к. мед. н., генеральний директор

Посилання

Almqvist C, Ekberg S, Rhedin S, Fang F, Fall T, Lundholm C. Season of birth, childhood asthma and allergy in a nationwide cohort-Mediation through lower respiratory infections. Clin Exp Allergy. 2019. Nov. 29. doi:10.1111/cea.13542.

Bousquet J, Schünemann HJ, Togias A, Bachert C, Erhola M, Hellings PW, et al. Next-generation Allergic Rhinitis and Its Impact on Asthma (ARIA) guidelines for allergic rhinitis based on Grading of Recommendations Assessment, Development and Evaluation (GRADE) and real-world evidence. J Allergy Clin Immunol. 2020;145(1):70-80. doi:10.1016/j.jaci.2019.06.049.

Carnés J, Iraola V, Cho SH, Esch RE. Mite allergen extracts and clinical practice. Ann Allergy Asthma Immunol. 2017;118(3):249-256. doi:10.1016/j.anai.2016.08.018.

Casset A, Khayath N, de Blay F. How In Vitro Assays Contribute to Allergy Diagnosis. Curr Allergy Asthma Rep. 2016;16(11):82.

Chan TF, Ji KM, Yim AK, et al. The draft genome, transcriptome, and microbiome of Dermatophagoides farinae reveal a broad spectrum of dust mite allergens. J Allergy Clin Immunol. 2015;135(2):539-548. doi:10.1016/j.jaci.2014.09.031.

Huang FL, Liao EC, Yu SJ. House dust mite allergy: Its innate immune response and immunotherapy. Immunobiol. 2018;223(3):300-302. doi:10.1016/j.imbio.2017.10.035.

Roche N, Anzueto A, Bosnic Anticevich S, Kaplan A, Miravitlles M, Ryan D, et al. The importance of real-life research in respiratory medicine: manifesto of the Respiratory Effectiveness Group: Endorsed by the International Primary Care Respiratory Group and the World Allergy Organization. Eur Respir J. 2019;54(3):1901511. doi:10.1183/13993003.01511-2019.

Tsutsumi H. Respiratory tract infection and allergy. Arerugi. 2019;68(9):1121-1125. doi:10.15036/arerugi.68.1121.

Vidal C, Lojo S, Juangorena M, Gonzalez-Quintela A. Association Between Asthma and Sensitization to Allergens of Dermatophagoides pteronyssinus. J Investig Allergol Clin Immunol. 2016;26(5):304-309. doi:10.18176/jiaci.0048.

Vidal-Quist JC, Ortego F, Lombardero M, Castañera P, Hernández-Crespo P. Allergen expression in the European house dust mite Dermatophagoides pteronyssinus throughout development and response to environmental conditions. Med Vet Entomol. 2015;29(2):137-146. doi:10.1111/mve.12102.

Waldron R, McGowan J, Gordon N, McCarthy C, Mitchell EB, Fitzpatrick DA. Proteome and allergenome of the European house dust mite Dermatophagoides pteronyssinus. PLoS One. 2019;14(5):e0216171. doi:10.1371/journal.pone.0216171.